Содержание материала

Существуют разные способы обработки черенков для стимулирования корнеобразования: быстрое погружение (обмакивание), длительное вымачивание, опудривание. При быстром погружении базальные концы черенков окунают на несколько секунд в концентрированный раствор препарата. При длительном замачивании базальные концы (иногда весь черенок) выдерживают в разбавленном растворе регулятора роста до 24 ч и более. При опудривании базальную часть обрабатывают порошком, который содержит регулятор роста и инертный наполнитель (тальк, глина, мел и пр.)Перечисленные способы пригодны для обработки как вегетирующих зеленых, так и вызревших одревесневших черенков.
В зависимости от применяемых регуляторов роста образуются различные корневые системы. Так, индолилмасляная кислота (ИМК) вызывает образование мощной корневой системы по типу мочковатой. Феноксикислоты индуцируют развитие утолщенной, разветвленной системы с низкой скоростью роста.

 Сравнительная оценка эффективности действия ауксинов и их синтетических аналогов на корнеобразование, выполненная нами на одревесневших черенках подвоя (сорта Берландиери X Рипариа СО 4, Берландиери X Рипариа Кобера 5ББ, Рипариа X Рупестрис 101-14) замачиванием база льных концов в растворах показала, что все испытываемые препараты стимулируют корнеобразование (табл. 5).
Наибольшей корнеобразовательной активностью с мягким действием в широком диапазоне концентраций обладает ИМК. Полученные в результате обработки черенков этим препаратом растения отличаются мощной корневой системой и хорошей облиственностью побегов. По сухой массе корней наибольший положительный эффект проявляется после обработки черенков в растворе 0,001%-й концентрации (в 2,6 раза выше, чем в контроле).

5. Влияние ауксинов и их синтетических аналогов на ризогенез черенков винограда (УНИИВиВ им. В. Е. Таирова, 1983 г.)

Вещество

Концентрация препарата, %

Сухая месса корней одного черенка, мг

Длина прироста, см

Контроль —
вода

58

14,1±1,6

ИУК

0,005

88

14,0±1,3

0,0025

136

10,2±1,3

»

0,001

71

11,4±1,4

а-НУК

0,005

41

6,4±0,7

»

0,0025

65

10,6±1,5

0,001

116

10,2±1,0

Амид Нук

0,005

50

5,9±2,6

»

0,0025

40

7,7±0,9

»

0,001

143

12,7±1,2

имк

0,005

136

12,7±1,1

»

0,0025

125

16,3±1,4

0,001

152

13,2±1,0

Гетероауксин также усиливает корнеобразование во всех взятых концентрациях — сухая масса корней в 2—2,3 раза выше, чем в контроле.
Нафтилуксусная кислота (НУК) и амид НУК по своему действию отличаются от ИМК и ИУК. Эти соединения очень активны, в повышенных концентрациях обладают токсическим действием, вызывая торможение роста побегов, аномалии в развитии корневой системы, наплывы каллусных масс и растрескивание черенков. Активность препаратов а-НУК для корнеобразования у подвойных черенков показана на рис. 1. При воздействии на базальную часть черенков растворами ИУК, а-НУК и амида НУК одной и той же концентрации (0,003 %) наиболее сильное корнеобразование стимулировал амид НУК (1526 мг сухой массы корней на 28 день стратификации в расчете на один черенок) и а-НУК  (1234 мг). Обработка ИУК дала  148 сухой массы корней при 3,7 мг в контроле. Стратификация проводилась на воде.

При вымачивании базальных концов черенков оптимальными были растворы а-НУК и амида НУК не более 0,001%-й концентрации (рис. 2).
ИМК и гетероауксин давно рекомендованы для использования в виноградном питомниководстве [31). Однако ИМК в нашей стране не производится, а производство гетероауксина в последние годы сокращено. Вместе с тем расширяется использование его в прививке перспективных подвоев, которые трудно укореняются (например, группы Берландиери X Рипариа). В связи с этим мы провели полевые и производственные испытания препаратов НУК для активации процессов корнеобразования при стратификации прививок на воде.
Применены различные способы и сроки воздействия стимуляторами роста на прививки: вымачивание подвойных черенков в растворах регулятора в течение 3 сут. перед прививкой; вымачивание привойных черенков в течение 15 ч; внесение раствора под пятку прививки во время закаливания и т. д.
После вымачивания привойных черенков сорта Сухолиманский белый перед прививкой в растворе а-НУК наибольшее увеличение выхода привитых саженцев достигается при концентрации 0.001 %. При более высокой концентрации раствора регулятора (0,002 %) проявляется снижение роста побегов и выхода саженцев (табл. 6). Подвоем служил сорт Рипариа Х Рупестрис 101-14.
В случае обработки подвойных черенков (вымачивание в растворе биологически активного вещества в течение 3 сут перед прививкой) наибольший положительный эффект получен после обработки в растворе а-НУК 0,0005%-й концентрации (5 мг/л) и при последующем окунании верхней части прививки в раствор а-НУК 0,001%-й концентрации (10 мг/л) перед парафинированием.

6. Влияние различных регуляторов роста на регенерационные процессы прививок винограда (УНИИВиВ им. В. Е. Таирова, 1982 г.)

Вариант

Концентрация препарата. %

Длина прироста, см

Выход стандартных саженцев, %

Контроль — вода

75,1±2,7

36,3

ИУК

0,01

80,8±2,7

41,0

а-НУК

0,001

88,5±3,0

44,6

а-НУК

0,002

72,2±3,0

40,5

Мезо-инозит

0,01

75,4±2,3

46,1

Такой способ обработки обеспечивает увеличение выхода привитых саженцев на 9,2—9,3 % и получение дополнительной прибыли в пределах 4—4,2 тыс. руб. на 100 тыс. прививок (табл. 7).
Разработана технология предпрививочной подготовки подвойных черенков с пониженной ризогенной активностью (группы Берландиери X Рипариа). Она заключается в применении гетероауксина в сочетании с предпрививочным прогревом подвойных черенков. Подвойные черенки после вымачивания в воде окунают на 1—1,5 с базальными концами в 0,1—0,2%-й раствор ИУК и укладывают в штабели на прогрев. При таком способе после 6—8 сут при температуре 22—26°С начало корнеобразования (закладка корневых бугорков) на черенках подвоя трудноукореняемых сортов отмечается еще до производства прививок [23].

7. Влияние вымачивания подвоя и последующего окунания верхней части прививок в растворах а-НУК на выход стандартных саженцев (УНИИВиВ им. В. Е. Таирова, 1985 г.)

Вариант

Количество
прививок,
шт.

Длина прироста, см

Получено саженцев
шт.       %

Иршаи Оливер

Контроль — вода

4830

119,3±5.0

1800   37,2

а-НУК

4740

124,8±5,3

2200   46,4

Ранний Магарача

Контроль — вода

3480

78,6±2.7

1136    34,1

а-НУК

3140

84,3±2,4

1364    43,4

При выращивании корнесобственных саженцев одревесневшими черенками на основании многолетних исследований установлены следующие концентрации растворов регуляторов роста при вымачивании черенков перед посадкой в течение 24 ч: ИУК — 200—300 мг/л, НУК — 20—25 мг/л, 2,4-ДМ (дихлорфеноксимасляная кислота) — 0,8— 2 мг/л; 2,4-Д (дихлорфеноксиуксусная кислота) — инициирует образование корней в концентрации 0,5 мг/л при 12-часовом вымачивании. Рекомендуется так организовать работу, чтобы после извлечения черенков из раствора они были высажены в тот же день.
Открытая закалка прививок за 7—10 дней до посадки их в школку в воде или в питательном растворе с добавлением гетероауксина 0,005%-й концентрации повышает выход привитых саженцев по сравнению с контролем от 12,5 до 90 % в результате лучшего развития корневой системы [16].

С целью улучшения укоренения зеленых черенков рекомендуется погружать их на 14 ч в раствор ИМК концентрации 150 мг/л. Это резко повышает процент прижившихся растений [28].
Стимулировать корнеобразование у винограда можно при использовании абсцизовой кислоты [36]. При этом у черенков винограда, обработанных АБК (10-6—10-8М), процесс образования корней подавлялся в условиях темноты, а стимулировался на свету [13]. Однако в практическом виноградарстве абсцизовая кислота вряд ли заменит ИМК, ИУК и НУК.
Исследовано физиологическое действие стимуляторов роста на поляризацию и последующее корнеобразование у черенков различных сортов винограда. Повышение интенсивности дыхания в морфологически нижних концах черенков и снижение ее в морфологически верхних под влиянием ИМК (0,01 %-й раствор, сорта Ркацители, Арарати, Кахет, Ереван желтый, Армения) показывают, что под влиянием стимуляторов роста происходит физиологическая поляризация черенков [31]. Начинается быстрое передвижение веществ к нижним концам черенков и их расходование на образование корней. Лишь после образования корней наблюдается активация ростовых процессов в верхних концах черенка, усиливается рост побегов. В черенках, не обработанных ИМК, питательные вещества затрачиваются, прежде всего, на распускание почек, рост зеленых побегов. Образование корней задерживается, они образуются после появления ассимилирующих листьев.
М. X. Чайлахян и М. М. Саркисова [31] установили отличия между легко- и трудно-укореняемыми растениями. Полученные результаты свидетельствуют о том, что при разделении культур на неукореняемые, трудно- и легкоукореняемые необходимо учитывать содержание стимуляторов и ингибиторов роста, их соотношение, а также способность взаимодействия с экзогенными синтетическими регуляторами роста. По мнению авторов, наличие высокого содержания ингибиторов роста в побегах неукореняющихся культур и отсутствие снижения их ингибиторного действия под влиянием синтетического ауксина, введенного извне,— одна из основных причин неукореняемости. У черенков легкоукореняющихся культур ИМК, введенная извне, легко сдвигает соотношение ауксины — ингибиторы в сторону ауксинов. Таким образом, гормонально-ингибиторный баланс в черенках и способность к его изменению в сторону стимуляторов роста при обработке синтетическими соединениями — одно из главных различий между легко- и трудноукореняемыми черенками.
Большинство исследователей единодушны в том, чти действие регуляторов роста на корнеобразование черенков сводится к тому, что они стимулируют и усиливают обмен веществ, процессы роста и развития. Максимов Н. А. [15] подчеркивал, что воздействие регуляторов роста на растительные клетки состоит в том, что эти вещества, прежде всего, влияют на коллоидно-химические свойства протоплазмы (проницаемость, вязкость) и усиливают поступление воды и растворенных веществ в клетки растений. На основании многолетних исследований P. X. Турецкая [28] также указывает на усиление обмена веществ в черенках при воздействии стимуляторов роста и отток питательных веществ к месту корнеобразования.

Исследования, выполненные М. X. Чайлахяном и М. М. Саркисовой [31], показывают, что корнеобразующей способностью наряду с синтетическими аналогами фито-гормонов обладают выделения бактерий — возбудителей растительных опухолей Pseudomonas tumefaciens и X. beticola. Это объясняется тем, что в выделениях бактерий — возбудителей опухолей растений присутствуют гормональные вещества типа ауксинов, гиббереллинов; обнаружены тиамин, рибофлавин, никотиновая кислота и др. Практическое значение такие выделения иметь не могут, так как синтетические регуляторы роста более доступны и физиологически более активны. Однако установленные взаимозависимости наличия стимуляторов роста и их влияния на корнеобразование, распускание почек и рост побегов могут иметь значение при решении вопроса о механизме образования растительных опухолей. На основании обнаружения ауксинов в выделениях Pseudomonas tumefaciens и искусственного получения опухолеподобных образований при воздействии ИУК, ИМК и НУК на раневые места выдвинута гипотеза, что в образовании опухолей, вызываемых Agrobacterium tumefaciens, участвуют ауксины и производные дезоксирибонуклеиновой кислоты.
Суммируя результаты исследований по обработке черенков винограда регуляторами роста растений необходимо отметить, что такая обработка не только способствует образованию большего числа корней, но и благоприятствует в последующем лучшей приживаемости укорененных черенков в почве.

Известно, что высокая приживаемость саженцев, их рост, вступление в плодоношение и продуктивность во многом зависят от качества посадочного материала, от мощности развития его надземных и подземных органов. Сведений о влиянии регуляторов роста на развитие саженцев винограда, высаженных на постоянное место, мало.
Влияние гиббереллина и индолилуксусной кислоты на зеленые саженцы, полученные из одно- и двухглазковых черенков, изучали М. X. Чайлахян и М. М. Саркисова [31]. Зеленые саженцы после пересадки в вегетационные сосуды трижды с интервалом в 10 дней опрыскивали растворами гиббереллина 0,01 и 0,005%-й концентрации. В результате обработки гиббереллином значительно увеличивался прирост саженцев по сравнению с контролем, лучше одревеснялся прирост. Хорошие результаты были получены при обработке зеленых побегов 0,01 %-м раствором. Обработка надземных органов саженцев гиббереллином существенно влияет на развитие корневой системы: изменяется общая структура образования корней, средняя длина корней, их число, процентное соотношение основных корней и корней последующих порядков, что способствует увеличению поглотительной поверхности корневой системы.

Одновременное введение ИУК и гиббереллина в полярно противоположные концы саженцев винограда (погружение корневой системы на 2 ч в 0,02%-й раствор ИУК и опрыскивание зеленых побегов раствором 0,01% -го гиббереллина) вызывало менее заметное стимулирование роста побегов и не у всех сортов. Предполагается, что при одновременном введении гиббереллина подавляется активность ИУК и, наоборот, ИУК подавляла активность гиббереллиновой кислоты.

Стимуляция роста побегов у саженцев винограда происходит и при обработке их корней 0,02%-м раствором гетероауксина. Саженцы, обработанные только ИУК, в росте побегов сильно уступают саженцам, обработанным гиббереллином, но намного превосходят их по развитию корневой системы, что является важным условием хорошей приживаемости.

Содержание ингибиторов роста фенольной и терпеноидной природы значительно увеличивается на свету. Под действием света количество флавоноидов, например, возрастает в 5—10 раз по сравнению с содержанием их в темноте. Отсюда можно сделать вывод, что выдерживание черенков в темноте должно способствовать лучшей укореняемости.